Referencias
Online ordering is not available in Latin America

El ADN libre circulante (cfDNA, por sus siglas en inglés) está constituido por fragmentos cortos de ADN que circulan fuera de las células en fluidos corporales como plasma, suero y orina. Estos fragmentos se liberan durante procesos de apoptosis y necrosis, y pueden incluir ADN de origen tisular o tumoral, lo que convierte al cfDNA en un analito de gran utilidad para la biopsia líquida, el cribado prenatal no invasivo (NIPT) y el diagnóstico de enfermedades infecciosas. [1]
Dado que el ADN libre circulante (cfDNA) suele encontrarse en bajas concentraciones y altamente fragmentado, es particularmente vulnerable a variaciones preanalíticas y a la contaminación por arrastre de ADN genómico (gDNA) derivado de la lisis celular. Como consecuencia, el rendimiento en las etapas posteriores del análisis (downstream) depende en gran medida de una manipulación cuidadosa de la muestra y de elecciones adecuadas en el método de extracción que permitan preservar fragmentos cortos y minimizar la contaminación.
Si bien el ADN libre circulante (cfDNA) y el ADN genómico (gDNA) son polímeros químicamente idénticos, representan dos firmas biológicas distintas. El gDNA corresponde al “archivo de información” genético estable, de alto peso molecular, que se extrae de células intactas para establecer la línea base genética heredada de un paciente. El cfDNA, en cambio, actúa como una foto instantánea molecular en tiempo real: un marcador dinámico de estados fisiológicos o patológicos, caracterizado por su baja concentración y alto grado de fragmentación. [2]
Característica | cfDNA | gDNA |
Origen biológico | Células apoptóticas/necróticas en fluidos corporales | Dentro de células intactas |
Forma física y abundancia | Fragmentos cortos, altamente fragmentados y baja abundancia | Fragmentos largos, alto peso molecular y en mayor concentración |
Estabilidad antes de la extracción | Menor; requiere procesamiento rápido para evitar lisis de leucocitos y arrastre de gDNA | Alta; estable por días bajo refrigeración |
Principales aplicaciones | Biopsia líquida, NIPT, MRD, monitoreo terapéutico, fragmentómica, ensayos de metilación | Genotipado germinal, diagnósticos hereditarios, análisis genómico de referencia |
Riesgo de contaminación cruzada | Elevado. Puede verse fácilmente interferido por gDNA liberado a partir de células lisadas si las condiciones preanalíticas no se controlan adecuadamente | Menor. Generalmente poco afectado por la contaminación con cfDNA; suele constituir la señal dominante cuando existe una alta cantidad de células |
Puede obtenerse a partir de plasma, suero u orina sin necesidad de biopsias invasivas.
Permite la detección temprana, el perfilado molecular y el monitoreo del tratamiento en diversos tipos de cáncer, así como aplicaciones en NIPT, vigilancia de trasplantes y detección de patógenos. [3]
Al liberarse durante apoptosis y necrosis, el cfDNA refleja señales en tiempo real de carga tumoral, respuesta terapéutica y enfermedad mínima residual.[4]
Un flujo de trabajo típico de cfDNA incluye: recolección y preservación de la muestra, separación (plasma/suero o sobrenadante de orina), extracción (mediante columnas de centrifugación o perlas magnéticas) y control de calidad antes de PCR o NGS. Cuando los resultados no son óptimos, la causa raíz suele encontrarse en etapas tempranas, especialmente retrasos en el procesamiento, estabilización insuficiente o recuperación inconsistente de fragmentos cortos.

En comparación con el gDNA, el cfDNA es más sensible a la variación preanalítica. Los retrasos en el procesamiento pueden aumentar la lisis de leucocitos y la contaminación por gDNA. Los tubos EDTA estándar ofrecen estabilidad limitada y requieren una separación rápida del plasma para minimizar este efecto.[6]
La concentración baja y variable del cfDNA hace que cualquier pérdida durante la manipulación, extracción o preparación de librerías reduzca la sensibilidad y aumente el riesgo de falsos negativos. [5] Algunos métodos tradicionales no capturan eficientemente fragmentos cortos (<160 bp), generando bibliotecas sesgadas.
Contaminación con gDNA
Una recolección inadecuada o retrasos en el procesamiento favorecen la lisis celular y la liberación de gDNA, especialmente durante almacenamiento o transporte con estrés mecánico o térmico.
El cfDNA degradado o contaminado puede reducir la sensibilidad en aplicaciones de baja frecuencia, como MRD, al aumentar el fondo de gDNA. Una estabilización adecuada permite flujos de trabajo más consistentes y confiables.[7][8]
El SPINeasy cfDNA Kit para Plasma y Suero admite grandes volúmenes de muestra (hasta 10 mL) y está diseñado para recuperar eficientemente fragmentos cortos de cfDNA, generando eluatos compatibles con PCR/qPCR y NGS.

Figura 1: Comparación de la eficiencia de extracción del SPINeasy cfDNA Kit for Plasma and Serum frente a otros kits competidores utilizando muestras de plasma y orina. El kit SPINeasy demuestra una recuperación superior de ADN libre circulante (cfDNA), según el análisis realizado con Agilent TapeStation, lo que destaca su eficacia para el aislamiento de cfDNA tanto en matrices de plasma como de orina.
El SPINeasy DNA Kit para Orina permite aislar tanto gDNA (del sedimento) como cfDNA (del sobrenadante) a partir de grandes volúmenes, facilitando análisis emparejados de forma no invasiva.

Figura 2: Calidad y cantidad de ADN libre circulante (cfDNA) extraído de una muestra de orina femenina utilizando el SPINeasy DNA Kit for Urine, en comparación con dos kits competidores.
a) Electroforesis en gel de agarosa del rendimiento de cfDNA aislado de la muestra de orina femenina.
b) Comparación de los valores de ciclo umbral (Ct) en ensayos de qPCR utilizando 1 μL de cfDNA aislado de la muestra de orina femenina con el SPINeasy DNA Kit for Urine y dos competidores. La amplificación se realizó utilizando tecnología SYBR Green.
El MagBeads Fast Circulating DNA Kit utiliza tecnología de perlas magnéticas optimizadas para capturar fragmentos <200 bp, es compatible con automatización y reduce la variabilidad del operador, el arrastre de gDNA y las inconsistencias asociadas a la centrifugación.
¿Listo para llevar su biopsia líquida al siguiente nivel?
En aplicaciones de baja frecuencia, como la biopsia líquida y la investigación de enfermedad residual mínima (MRD), pequeñas pérdidas preanalíticas pueden acumularse rápidamente. La estabilización temprana de las muestras y la elección de un método de extracción optimizado para la recuperación de fragmentos cortos pueden mejorar la consistencia entre corridas y proteger la sensibilidad analítica.
Utilice los enlaces a continuación para comparar las opciones de estabilización y extracción según el tipo de muestra y las necesidades de rendimiento.